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植物DNA提取过程中，CTAB（十六烷基三甲基溴化铵）扮演着关键角色。CTAB作为一种阳离子去污剂，能够与核酸形成稳定的复合物。在高盐浓度（超过0.7摩尔/升）条件下，CTAB-核酸复合物溶解度较高，而在较低盐浓度（0.1至0.5摩尔/升）下则会沉淀。通过使用有机溶剂进行抽提，去除蛋白质、多糖及酚类等杂质后，再加入乙醇进行沉淀，即可分离出核酸。CTAB-核酸复合物通过离心弃去上清液，再用70%的酒精浸泡，可以洗脱掉CTAB，进而获得纯净的DNA。
无水乙醇作为理想的沉淀剂，能够安全地与DNA相互作用。当DNA溶液中的水分子被乙醇夺走时，DNA会脱水并易于聚合，从而实现DNA的沉淀。乙醇的这一特性使得它成为植物DNA提取过程中不可或缺的试剂。
氯仿在植物DNA提取过程中主要用于克服酚的缺点，并加速有机相与液相的分层。它在这一过程中扮演着关键角色，有助于DNA的分离与纯化。
[实验试剂]
1）研磨缓冲液：称取59.63gNaCl，13.25g柠檬酸三钠，37.2gEDTA－Na分别溶解后合并为一，用0.2mol/L的NaOH调至pH7.0，并定容至1000ml。
2）10SSC溶液：称取87.66gNaCl和44.12g柠檬酸三钠，分别溶解，一起定容至1000ml。
3）1SSC溶液：用10SSC溶液稀释10倍。
4）0.1SSC溶液：用1SSC溶液稀释10倍。
5）RNase溶液：用0.14mol/LNaCl溶液配制成25mg/ml的酶液，用1mol/LHCl，pH至5.0，使用前经80℃水浴处理5min（以破坏可能存在的DNase）。
6）氯仿－异戊醇：按24ml氯仿和1ml异戊醇混合。
7）5mol/L高氯酸钠溶液：称取NaClO4．H2O70.23g，先加入少量蒸馏水溶解，定容至100ml。
8)SDS（十二烷基硫酸钠）化学试剂的重结晶：将SDS放入无水酒精中达到饱和为止，然后在70～80℃的水浴中溶解，趁热过滤，冷却之后即将滤液放入冰箱，待结晶出现再置室温下晾干待用。
9)1mol／LHCl10)0.2mol/LNaOH11)二苯胺乙醛试剂：1.5g二苯胺溶于100ml冰醋酸中，添加1.5ml浓硫酸，装入棕色瓶，贮存暗处，使用时加0.1ml乙醛液［浓乙醛：H2O＝1：50（V／V）］。
12)1.0mol/L高氯酸溶液（HClO4）
13)0.05mol/LNaOH14)DNA标准液：取标准DNA25mg溶于少量0.05mol/LNaOH中，再用0.05mol/LNaOH定容至25ml，后用移液管吸取此液5ml至50ml容量瓶中，加5.0ml1mol/LHClO4，混合冷却后用0.5mol/LHClO4定容至刻度，则得100μg/ml的标准溶液。
2)将匀浆无损转入25ml刻度试管中加入等体积的氯仿－异戊醇混合液，加上塞子，剧烈振荡30s，转入离心管，静置片刻以脱除组织蛋白质。以4000rpm离心5min。
3)离心成三层，小心地吸取上层清液至刻度试管中，弃去中间层的细胞碎片、变性蛋白质及下层的氯仿。
4)将试管置72℃水浴中保温3min（不超过4min），以灭活组织的DNA酶，然后迅速取出试管，置于冰水浴中冷却到室温，加5mol/L高氯酸钠溶液［提取液：高氯酸钠溶液＝4：1（V／V）］，使溶液中高氯酸钠的最终浓度为1mol/L。
5)再次加入等体积氯仿－异戊醇混合液至大试管中，振荡1min，静置后在室温下离心（4000rpm）5min，取上清液置小烧杯中。
6)用滴管吸95％的预冷乙醇，慢慢地加入烧杯中上清液的表面上，直至乙醇的体积为上清液的两倍，用玻璃棒轻轻搅动。此时核酸迅速以纤维状沉淀缠绕在玻璃棒上。
7)然后加入0.5ml左右的10SSC，使最终浓度为1SSC。
8)重复第6步骤和第7步骤即得到DNA的粗制品。
9)加入已处理的RNase溶液，使其最后的作用浓度为50～70μg/ml，并在37℃水浴中保温30min，以除去RNA。
10)加入等体积的氯仿－异戊醇混合液，在三角瓶中振荡1min，再除去残留蛋白质及所加RNase蛋白，室温下以4000rpm离心5min，收集上层水溶液。
11)再按6、7步骤处理即可得到纯化的DNA液。
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